• Pré-requis et Objectifs
• Cours
  • Contenu
    • 1 - Généralités
    • 2 - Caractères de la bactérie
      • 2.1 - Morphologie (Figure 1)
        • 2 . 1 . 1 - MO à fond noir (X10 et X25)
        • 2 . 1 . 2 - Pour améliorer sa visualisation
        • 2 . 1 . 3 - Mobilité
        • 2 . 1 . 4 - Modifications avec le vieillissement
        • 2 . 1 . 5 - Division
        • 2 . 1 . 6 - Colorations
      • 2.2 - Structure
        • 2 . 2 . 1 - Axostyle
        • 2 . 2 . 2 - Cylindre cytoplasmique
        • 2 . 2 . 3 - Membrane cytoplasmique
        • 2 . 2 . 4 - Enveloppe
      • 2.3 - Caractères culturaux
        • 2 . 3 . 1 - Milieux de cultures
        • 2 . 3 . 2 - Conditions de cultures
        • 2 . 3 . 3 - Croissance
        • 2 . 3 . 4 - Aspect des cultures
        • 2 . 3 . 5 - Cas des prélèvements contaminés
        • 2 . 3 . 6 - Cas des hémocultures
      • 2.4 - Résistance - Vitalité
        • 2 . 4 . 1 - Conservation des souches
      • 2.5 - Caractères biochimiques
        • 2 . 5 . 1 - Besoins nutritifs
      • 2.6 - Produits élaborés
      • 2.7 - Caractères antigéniques
    • 3 - Pouvoir pathogène
      • 3.1 - Pouvoir pathogène expérimental
        • 3 . 1 . 1 - Animaux sensibles
        • 3 . 1 . 2 - Tableau clinique
        • 3 . 1 . 3 - Autopsie
      • 3.2 - Pouvoir pathogène naturel
        • 3 . 2 . 1 - Signes fondamentaux
        • 3 . 2 . 2 - Signes facultatifs
        • 3 . 2 . 3 - Evolution
      • 3.3 - Physiopathologie
      • 3.4 - Immunité
      • 3.5 - Prophylaxie – Traitement
        • 3 . 5 . 1 - Prophylaxie
        • 3 . 5 . 2 - Sensibilité aux antibiotiques
        • 3 . 5 . 3 - Traitement
      • 3.6 - Epidémiologie
        • 3 . 6 . 1 - Répartition géographique
        • 3 . 6 . 2 - Cycle épidémiologique (Figure 3)
        • 3 . 6 . 3 - Mode de contamination
    • 4 - Diagnostic de laboratoire
      • 4.1 - Chronologie des examens en fonction de l’évolution
      • 4.2 - Diagnostic direct
        • 4 . 2 . 1 - Prélèvements
        • 4 . 2 . 2 - Culture
        • 4 . 2 . 3 - Amplification génique
      • 4.3 - Diagnostic indirect
        • 4 . 3 . 1 - Réaction macroscopique ou macro-agglutination sur lame
        • 4 . 3 . 2 - Méthode par ELISA
        • 4 . 3 . 3 - Réaction microscopique d'agglutination-lyse (MAT)
  • Version Enseignants
  • Version PDF
• Annexes
• Votre Avis
• Ressources Enseignants

• Aide
• Auteurs
• Contacts

2  -  Caractères de la bactérie

2 . 1  -  Morphologie (Figure 1)

Figure 1 : Morphologie

2 . 1 . 1  -  MO à fond noir (X10 et X25)

Longueur 6 à 20 µm; diamètre 0,1 µm.

Filament hélicoïdal, plus ou moins rigide, sans souplesse, 18 tours de spires ou plus, longueur d'onde de la spire: 0,5 µm ; pas de la vis à droite.

Corps à 2-3 ondulations lâches.

Extrémités effilées avec inflexions en crochets.

2 . 1 . 2  -  Pour améliorer sa visualisation

Il s’agit de pratiquer une centrifugation douce du sang traité par oxalate de sodium ou héparine: élimination des éléments cellulaires pour supprimer les interférences. Puis une centrifugation à vitesse élevée pour concentrer les éléments restants qu'on examine.

Il y a une possibilité de faux positifs par présence de fibres ou éléments cellulaires.

Il faut réserver le microscope à fond noir pour les prélèvements riches en Leptospires (sang, liquide péritonéal et foie d'animaux infectés).

L'absence de Leptospires n'élimine pas le diagnostic. A confirmer obligatoirement par cultures ou tests sérologiques.

2 . 1 . 3  -  Mobilité

La mobilité est intermittente, assez rapide. Les mouvements sont dus à l'axostyle.

Il y a trois mouvements:

• flexion: disparait en 1er sous antibiothérapie et avec des anticorps spécifiques.
• rotation, en vrille, très rapide.
• translation: déplacement dans le sens antéro-postérieur.

2 . 1 . 4  -  Modifications avec le vieillissement

Cela se manifeste par la présence de formes bouclées, dérouléees, granulaires. Présence de granules spirochétogènes aux extrémités en signes de souffrance de la bactérie.

2 . 1 . 5  -  Division

La division se fait selon un mode transversal: épaississement de la zone médiane avec étirement filiforme.

Le rythme de division est très lent : 16 fois inférieur à celui d'une autre bactérie.

2 . 1 . 6  -  Colorations

Elles sont délicates, normalement à Gram négatif.

• par technique de surcoloration: Vago (mercurochrome + violet méthyl), Fontana-Tribondeau (argent).
• par fluorescence avec anticorps spécifiques.